Within the long standing collaboration between the LATVIAN BIOMEDICAL RESEARCH AND STUDY CENTRE (BMC), RIGA, and the KIRCHHOFF-INSTITUTE FOR PHYSICS, HEIDELBERG,  we are happy to invite you to the

International Symposium "Spatial-temporal genome regulation in stress- response and cell-fate change“

which will be held in Riga and virtually on July 25th, 2022. The Programme can be downloaded here. Participation is free of costs either in Riga or online.

The aim of the symposium is to present current research about cellular nucleus response to environmental stress or changes in the cell-fate, e.g. changes towards tumour development. A special  the focus will be on reactions of the cell nucleus chromatin as an overall system.

The streaming link is:
https://meet.jit.si/Spatial-temporal_genome_reguation

 

FINAL PROGRAMME & BOOK OF ABSTRACTS

This conference of the Baltic-German University Liaison Office ("Baltisch-Deutsches Hochschulkontor") is supported by the German Academic Exchange Service (DAAD) with funds from the Foreign Office of the Federal Republic Germany


 

 

Experimentelle Biophysik

 

In zellulären Systemen stellt die DNA im Zellkern den zentralen Datenspeicher für vielfältige Funktionen dar. Neben der reinen Sequenz von DNA-Molekülen spielt jedoch die dreidimensionale räumliche Organisation der Mikro- und Nanoarchitektur eine wichtig Rolle zur Steuerung des komplexen Systems Zelle. Darüber hinaus findet man in den DNA-Sequenzdaten charakteristische Muster, die nicht zufällige Ordnungsprinzipien erwarten lassen und die in der Evolution entlang phylogentischer Linien hochgradig konserviert erscheinen.

Zelluläre Daten, die im Zellkern gespeichert sind, führen zu komplexen Funktionskaskaden und Regulationszyklen auf der Ebene der zellulären Proteine. Diese Funktionszyklen spiegeln sich häufig in Signalmolekülen auf der Zellmembran wider, so dass zelluläre Systeme mit ihrer Umgebung sich austauschen können. Gene und Nukleotidsequenzen im Zellkern und Proteine und Rezeptoren auf der Zellmembran können somit als korrespondierende Punkte von komplexen Funktionskaskaden eines Zellsystems gesehen werden. Molekular chemisch oder physikalisch getriggerte Veränderungen auf der einen wie auf der anderen Seiten führen zur räumlichen Umordnungen und Umverpackungen der DNA bzw. der Rezeptoren und Proteine, deren Dynamik und Charakteristika mittels moderner Methoden der hochauflösenden Mikroskopie und Nanomarkierung erforscht werden können.

Die Arbeitsgruppe „Experimentelle Biophysik“  beschäftigt sich unter Berücksichtigung biomedizischer und medizinisch diagnostischer Fragestellungen und Anwendungen mittels Verwendung von Fluoreszenzmikroskopie und hochauflösender Lokalisationsmikroskopie mit Fragen der Organisation von Biomolekülen und Zellbestandteilen in zellulären Systemen. Die Arbeiten dienen neben der Grundlagenforschung auch der angewandten Forschung in den Gebieten der Strahlenbiophysik und Tumormedizin.

Zur Erforschung des Informationsgehalts des Zellkernchromatins werden DNA Datenbanken auf spezische Muster analysiert und verglichen. Aus diesen Daten werden einerseits grundlegende Erkenntnisse der Chromatinorganisation gewonnen, andereseits können aus diesen Datenbanken auch Sequenzen von spezifischen Nanomarkern für die Mikroskopie auf der Basis von Oligonukleotiden bestimmt werden.

Solche und andere molekulare Markierungsmethoden erlauben es, sehr genaue Untersuchungen zu Strukturen und Organisationsprinzipien in dreidimensional erhaltenen Zellen durchzuführen. Dazu werden Zellen nicht nur äußeren Stimuli, wie ionisierender Strahlung, molekularen Liganden oder therapeutischen Antikörpern, sondern auch  insbesondere geometrisch-physikalischen Randbedingungen ausgesetzt, die es ermöglichen, gewebenahe Zellensembles zu imitieren.

Die Erforschung von intrinsischer Information, die in Zellen archiviert und prozessiert wird, führt in einem interdisziplinären Diskurs zwischen Natur- und Geisteswissenschaften zu prinzipiellen Untersuchungen zur Organisation und Nutzung von Archiven im erweiterten Sinn.

Darüber hinaus werden aus theoretischen Betrachungen heraus Bedingungen bestimmt und untersucht, die für eine Entwicklung von lebensrelevanten molekularen Vorausetzungen auch unter extremen Randbedingungen möglich sind.

In der Arbeitsgruppe werden somit auf unterschiedlichen Ebenen der Komplexität und unter unterschiedlichen Randbedingungen zelluläre und subzelluläre Organisationstrukturen sowohl aus theoretischer wie auch aus experimenteller Sicht erforscht und in ein kohärentes biophysikalisches Bild zellulärer und subzelluläre Systeme zusammengefügt. Im einzelnen lassen sich die Arbeiten in folgende Projekte unterteilen:

 

Bachelor- / Masterarbeiten: Zu den laufenden Forschungsprojekten vergeben wir ständig Bachelor- und Masterarbeiten. Die Themen richten sich dabei nach aktuellen Fragestellungen, wobei auch persönliche Interessen und Neigungen berücksichtigt werden können. Falls Sie Interesse an unserer Arbeit haben, wenden Sie sich bitte an Herrn Prof. Hausmann oder einen seiner Mitarbeiter.

 

 

Die Arbeiten werden gefördert von:

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Analyse von Genommustern

Analyse von Genommustern

COMBO-FISH (COMBinatorial Oligo Fluoreszenz In Situ Hybridisierung)

Etablierte Verfahren der FISH (Fluoreszenz In Situ Hybridisierung) nutzen als Sonden lange DNA-Sequenzen (> einige tausend Basen), die enzymatisch geschnitten und molekularbiologisch vermehrt werden. Die Lage der Markierungsregionen im Genom ist daher stark von der Lage der Schnittstellen bestimmt und führt insbesondere bei kleinen Genen zu weit über das Gen hinausgehende Markierungssonden.

Hinzu kommt, dass neue fluoreszenzmikroskopische Techniken, wie Lokalisationsmikroskopie, SNOM oder Wellenfeldmikroskopie etc.) in der Lage sind Strukturen des Chromatin auf der Nanometerskala zu vermessen, d.h. es werden einzelne Biomoleküle lokalisiert und deren Abstände bestimmt. Hierzu sind prinzipiell fluoreszente Sonden notwendig. Allerdings muss man bei Experimenten auf der Nanoskala berücksichtigen, dass diese Sonden aufgrund ihrer Größe keinen bzw. einen möglichst vernachlässigbaren Einfluss auf die native Struktur haben.

Kurze Oligonukleotide (< 50 Basen) lassen sich synthetisch in beliebiger Basenfolge sehr rein herstellen; allerdings ist bereits aus statistischen Gründen die Spezifität solcher Einzelsonden beschränkt. Die Kombination mehrerer solcher Sonden sollte jedoch eine spezifische Kolokalisation ermöglichen, so dass eine grundlegend andere Vorgehensweise erreicht werden kann, bei der der Aufbau von größeren Markierungsbereichen durch mehrere kleine DNA-Oligosequenzen erreicht wird. Damit ist das Problem der fokussierten Genmarkierung auf eine geeignete Kombinatorik von kleinen Oligonukleotiden reduziert. Gleichzeitig hat man Sonden, die sehr klein sind und entlang des Chromatinstrangs "Landmarken" setzen, aus denen eine Struktur berechnet werden kann.


An ausgewählten Beispielen aus der Tumordiagnostik (Bestimmung von Vielfachen von Genen), der Erforschung genetisch bedingter Erkrankungen (z.B. Fragiles X Syndrom) oder der Strahlenbiophysik (Untersuchung von Bruchereignissen der DNA) werden Kombinationen von Oligonukleotidsonden (typischerweise 15mere bis 30mere) zusammengestellt, die eine hochspezifische Fluoreszenzmarkierung der gewünschten Genloci mittels COMBO-FISH (COMBinatorial Oligonucleotide Fluorescence In Situ Hybridization) erlauben. Die Oligonukleotidkombinationen werden nach verschiedenen biophysikalischen Parametern so aus einer Genomdatenbank bestimmt werden, dass die Markierung auf den Genlokus im Zellkern fokussiert erfolgt und benachbarte Genombereiche nicht überdeckt werden. Damit kann gegenüber bisher etablierten Markierungsverfahren eine wesentlich höhere Spezifität und Selektivität der Markierung erreicht werden, so dass von Genkopienzahlveränderungen bis zu Strukturmessungen von Nanoschleifen genaue Untersuchungen möglich werden.

Durch die auf den Genlokus fokussierte Markierung aus spezifisch kolokalisierenden, kleinen Oligosonden ist es ferner möglich, die räumliche Ausdehnung eines einzelnen Genlokus im Zellkern durch hochauflösende Verfahren der Lichtnanoskopie genauer zu erfassen und in Relation zum Expressionsmuster der Zellen zu setzen. Schleifen und Netzwerke geeigneter Sondenmuster geben  Auskunft über die nanoskalige Architektur des Zellkerns.

Weitere Informationen
Hausmann M, Cremer C. Verfahren zur mikroskopischen Ortsbestimmung eines ausgewählten, intrazellulären DNA-Abschnitts bekannter Nukleotidsequenz, Europäisches Patent, (EP 06006213.0), Anmeldetag 25. März 2006, erteilt am 13. 10. 2009.

 

Serie von Bildschnitten nach konfokaler Mikroskopie  und 3D Rekonstruktion eines Zellkerns

[ Serie von Bildschnitten nach konfokaler Mikroskopie und 3D Rekonstruktion eines Zellkerns. Das mit der Entstehung von Brustkrebs in Zusammenhang stehende Gen Her2/neu ist mittels 20 Oligonukleotid-Sonden spezifisch markiert. ]

Strahlenbiophysik des Zellkerns

In dem vom BMU geförderten Projekt der Strahlenbiophysik „3D/4D Architektur von chromosomalen Bruchpunktregionen in Zellkernen nach Bestrahlung von Krebs- und nicht-Krebszellen“, das gemeinsam mit Prof. Christoph Cremer (bis 31.12.2011: Forschungsgruppe „Angewandte Optik und Informationsverarbeitung“ am KIP, jetzt: Institut für Molekulare Biologie, Mainz)  durchgeführt wird, geht es um die Erforschung der 3D Mikro- und Nanoarchitektur des Zellkerns und ihren Veränderungen nach Exposition ionisierender Strahlung.
Viele Forschungsergebnisse haben hierzu in den letzten Jahren gezeigt, dass das Genom im Zellkern sowohl auf der Mikro- als auch auf der Nanoskala nicht zufällig, sondern funktionell korreliert, organisiert ist. Nach Strahlenexposition unterliegt die 3D Architektur einer dynamischen Veränderung, die eng mit den jeweiligen Reparaturprozessen in Wechselwirkung steht. Ziel des Projektes ist es mit Hilfe neuer experimenteller Methoden und Computersimulationen (Kooperation D.W. Heermann, Institut für Theoretische Physik, Heidelberg) die Mechanismen zu erforschen, die die 3D Mikro- und Nanoarchitektur und ihre strahleninduzierten Veränderungen begründen. Die Kombination von spezifischen Mehrfarben-Fluoreszenz-Markierungsmethoden und hochauflösenden 3D Mikroskopie- und Lokalisationsnanoskopie-Techniken (SPDM = „Spatial Position Determination Microscopy“), die über lange Jahre am KIP entwickelt wurden, erlauben während des Ablaufs von Reparaturprozessen einen detaillierten Einblick in die supramolekulare und molekulare Organisation des Chromatins in Zellkernen zu erlangen. Auf der Ebene chromosomaler Cluster, wie z.B. Heterochromatin oder Euchromatin, als auch auf der Ebene ganzer Chromosomen werden die Auswirkungen von Strahlenexposition untersucht.

Das Projekt ist Teil eines Verbundes mit der Universität Darmstadt (Prof. M. Löbrich), der Universität der Bundeswehr, München (Prof. G. Dollinger), dem Klinikum der Ludwig Maximilians Universität, München (PD Dr. A. Friedl) und dem Helmholtzzentrum München (Dr. W. Friedland). Weitere Kooperationspartner sind: Institut für Radiobiologie der Bundeswehr assoziiert an der Universität Ulm (Prof. H. Scherthan) und dem Biomedical Research and Study Center, Riga, Lettland (Dr. J. Erenpreisa).

 

 

[ Beispiel eines Mikroskopbildes eines Zellkerns, in dem verschiedene Chromosomen spezifisch markiert sind. Bei Hochdosisbestrahlung versuchen die Zellen der mitotischen Katastrophe zu entgehen, indem sie ihre endopolyploide Genome umordnen (statistische Darstellung eines Beipiels) und diploide Zellen segregieren. ]

[ Darstellung eines Schnittbildes eines Zellkerns, bei dem die Nukleosomen spezifisch markiert wurden. Mittels SPDM-Lokalisationsmikroskopie wurden in einer Bildserie von mehreren hundert Bildern die Orte einzelner Moleküle, die durch Laserstrahlung zum Blinken angeregt werden können, bestimmt und im vorliegenden Bild rekonstruiert. Aus der Analyse der Punktmuster können Strukturen und ihre Veränderungen nach Strahlenexposition bestimmt werden. ]

Erforschung der 3D Nanoarchitektur von Rezeptorclustern der Zellmembran

In diesem Projekt wird am Beispiel der Nanostruktur von Rezeptorenclustern von erb-B2 und erb-B3 gezeigt, wie abhängig von genetischen Expressionsmustern bzw. der jeweiligen Signalwege unterschiedliche Stadien von Tumorzellen auf dem Einzelzellniveau durch Analysen mittels Lokalisationsmikrokopie (Kooperation Prof. Christoph Cremer, Institut für Molekulare Biologie, Mainz) diskriminiert werden können. Dies bietet neue Perspektiven bei der Erforschung der Kanzerogenese und den Untersuchungen zur Wirkung von Chemotherapeutika (Beispiel Trastuzumab-Therapie des Brustkrebs). Ebenso können Strahlenwechselwirkungen im Hinblick auf ihre Auswirkungen bei der Rezeptorclusterung und –aktivierung untersucht werden.
 

[ Darstellung eines Ausschnittes der Zellmembran, bei der erb-B2 mittels Antikörper markiert wurde. Die kreisförmige Ausschnittsvergrößerung zeigt, dass sich einzelne Punkte aus mehreren fluoreszenten Molekülen zusammensetzen, die Cluster bilden. Durch Präzisionsmessung der Abstände in den Clustern kann man die Zellen hinsichtlich der Tumorgenese klassifizieren und dynamische Veränderungen durch Stimulation von Expressionsmustern detektieren. ]

Herstellung künstlicher 2D- und 2D-Gewebeverbände

Zellorientierende Topographien werden in Zellsystemen wie Schilddrüsencarcinocyten, Fibroblasten, Myoblasten und Myocyten, Macrophagen und embryonalen Mäusestammzellen eingesetzt. Die Kombination von Belichtungsmasken und Photolack-Lift Off Verfahren mit Kathodenbeschichtung auf mikroskopierbaren Gläsern erzeugt zweidimensionale Elektrodenmuster. Ein Abformverfahren in poly-Dimethyl-Siloxan (PDMS) legt die zellorientierenden Topographien ab. Projektive Mikropolymerisation baut Überwurfstrukturen aus poly-2-Hydroxyethyl-Methacrylat (pHEMA) zur makroskopischen Beschneidung der Zellgewebe auf. Die mikrotopographischen Oberflächen werden auf dem Wege der Projektionsmikrolithographie in einem inversen Lichtmikroskop durch kontaktfreie Belichtung einer Projektionsmaske mit einer zellabweisenden Schicht aus pHEMA umschrieben. Im einfachsten Fall ergeben sich auf diese Weise hochdichte Arrays aus Mikrokavitäten zur automatisierten Befüllung mit Kulturmedien, lebenden Zellen und RNAi Transfektionslösungen.

 
Kontakt:

Prof. Dr. Michael Hausmann

Kirchhoff-Institut für Physik
Im Neuenheimer Feld 227
69120 Heidelberg
 
Michael Hausmann wurde auf der Jahrestagung 2021 der Deutschen Gesellschaft für Biologische Strahlenforschung (DeGBS) der Ulrich-Hagen Preis für hervorragende Verdienste um die Strahlenforschung in Deutschland und sein wissenschaftliches Lebenswerk verliehen.
Publikationen/Publications
Gesamtverzeichnis bis einschließlich 2020 /
List of publications until 2020

2022
  1. Hildenbrand G, Paschek K, Schäfer M, Hausmann M (2022) Cryovolcanism in the solar system and beyond: Considerations on energy sources, geological aspects, and astrobiological perspectives. In: “Astronomy” (Chemin Y H, ed.)Intech-Open, Rijeka,Available: https://www.intechopen.com/online-first/81911;doi: 10.5772/intechopen.105067
  2. Chakraborty S, Singh M, Pandita R, Singh V, Lo C, Leonard F, Horikoshi N, Moros E, Guha D, Hunt C, Makhijani K, Chau E, Ahmed K, Sethi P, Charaka V, Godin B, Makhijani K, Scherthan H, Deck J, Hausmann M, Mushtaq A, Altaf M, Ramos K, Bhat K, Taneja N, Das C, Pandita T (2022) Heat-induced SIRT1-mediated H4K16ac deacetylation impairs resection and SMARCAD1 recruitment to double strand breaks. iScience 25, 104142.
  3. Rodener D, Hausmann M, Hildenbrand G (2022) Assessing the potential for liquid solvents from X-ray sources: considerations on bodies orbiting AGN. Preprint at arXiv:2202.04562 [astro-ph.EP]
  4. Chakraborty S, Singh M, Pandita R, Singh V, Lo C, Leonard F, Horikoshi N, Moros E, Guha D, Hunt C, Makhijani K, Chau E, Ahmed K, Sethi P, Charaka V, Godin B, Makhijani K, Scherthan H, Deck J, Hausmann M, Mushtaq A, Altaf M, Ramos K, Bhat K, Taneja N, Das C, Pandita T (2022) Heat-induced SIRT1-mediated H4K16ac deacetylation impairs resection and SMARCAD1 recruitment to double strand breaks. Preprint at SSRN: https://ssrn.com/abstract=4007582 or http://dx.doi.org/10.2139/ssrn.4007582
  5. Dobešová L, Gier T, Kopečná O, Pagáčová E, Vičar T, Bestvater F, Toufar J, Bačíková A, Kopel P, Fedr R, Hildenbrand G, Falková I, Falk M, Hausmann M (2022)Incorporation of low concentrations of gold nanoparticles: Complex effects on radiation response and fate of cancer cells. Pharmaceutics 14: 166. https://doi.org/10.3390/pharmaceutics14010166
2021
  1. Hahn H, Neitzel C, Kopecná O, Heermann DW, Falk M, Hausmann M (2021) Topological analysis of γH2AX and MRE11 clusters detected by localization microscopy during X-ray-induced DNA double-strand break repair. Cancers 13, 5561. https://doi.org/10.3390/cancers13215561
  2. Sievers A, Sauer L,  Hausmann M, Hildenbrand G (2021) Eukaryotic genomes show strong evolutionary conservation of k-mer composition and correlation contributions between introns and intergenic regions. Genes 12, 1571.
    https://doi.org/10.3390/genes12101571
  3. Hausmann M, Neitzel C, Hahn H, Winter R, Falkova I, Heermann DW, Pilarczyk G, Hildenbrand G, Scherthan H, Falk M (2021) Space and time in the universe of the cell nucleus after ionizing radiation attacks: a comparison of cancer and non-cancer cell response. (presented on 1st Int. Elec. Conf. Cancers: Exploiting Cancer Vulnerability by Targeting the DNA Damage Response) Med. Sci. Forum 3: 15. https:// doi.org/10.3390/IECC2021-09219
  4. Paschek K, Roßmann A, Hausmann M, Hildenbrand G (2021) Analysis of tidal accelerations in the solar system and in extrasolar planetary systems. Appl. Sci. 11, 8624.https://doi.org/10.3390/app11188624
  5. Bartosova M, Ridinger D, Marinovic I, Heigwer J, Zhang C, Levai E, Westhoff JH, Schaefer F, Terjung S, Hildenbrand G, Krunic D, Bestvater F, Hausmann M, Schmitt CP,  Zarogiannis SG (2021) An experimental workflow for studying barrier integrity, per-meability, and tight junction composition and localization in a single endothelial cell monolayer: Proof of concept. Int. J. Mol. Sci. 22: 8178.
    https://doi.org/10.3390/ijms22158178
  6. Paschek K, Roßmann A, Hausmann M, Hildenbrand G (2021) Analysis of tidal accelerations in the solar system and in extrasolar planetary systems. Preprints 2021: 2021070408. doi: 10.20944/preprints202107.0408.v1
  7. Hausmann M,Neitzel C, Bobkova E, Nagel D, Hofmann A, Chramko T, Smirnova E, Kopecná O, Pagácová E, Boreyko A, Krasavin E, Falkova I, Heermann DW, Pilarczyk G, Hildenbrand G, Bestvater F, Falk M (second publication 2021) Single Molecule Localization Microscopy analyses of DNA-repair foci and clusters detected along particle damage tracks. In: Applied Nuclear Physics at Accelerators (Durante M, Patera V, Prezado Y, eds.) Lausanne: Frontiers Media SA. doi: 10.3389/978-2-88971-039-3: 363-377
  8. Erenpreisa J, Krigerts J, Salmina K, Gerashchenko BI, Freivalds T, Kurg R, Krufczik M, Winter R, Zayakin P, Hausmann M, Giuliani A (2021) Heterochromatin networks: topology, dynamics, and function (a working hypothesis). Cells 10, 1582. https://doi.org/10.3390/cells10071582
  9. Hausmann M, Falk M, Neitzel C, Hofmann A, Biswas A, Gier T, Falkova I, Heermann DW, Hildenbrand G (2021)Elucidation of the clustered nano-architecture of radiation-induced DNA damage sites and surrounding chromatin in cancer cells: A Single Molecule Localization Microscopy approach. Int. J. Mol. Sci. 22: 3636 doi.org/10.3390/ijms22073636
  10. Krigerts J, Salmina K, Freivalds T, Zayakin P, Rumnieks F, Inashkina I, Giuliani A,  Hausmann M, Erenpreisa J (2021) Differentiating breast cancer cells reveal early large-scale genome regulation by pericentric domains. Biophys. J. 120: 711-724; https://doi.org/10.1016/j.bpj.2021.01.002
  11. Lee J-H, Hausmann M (2021) Super-resolution radiation biology: From bio-dosimetry towards nano-studies of DNA repair mechanisms. In: “DNA-Repair” (BehzadiP, ed.). Intech-Open, Rijeka, ISBN 978-1-83881-094-8: DOI: http://dx.doi.org/10.5772/ intechopen.95597
  12. Falk M, Hausmann M (2021) A paradigm revolution or just better resolution - will newly emerging superresolution techniques identify chromatin architecture as a key factor in radiation-induced DNA damage and repair regulation?. Cancers 13, 18. https://dx.doi.org/10.3390/cancers13010018
2020
  1. Falk M, Hausmann M (2020). Nové poznatky o poškození bunek a chromatinu (DNA) ruznými druhy ionizujícího zárení v ére pokrocilé optické mikroskopie a nanoskopie [New discoveries on cell and chromatin damage by different types of ionizing radiation in the era of advanced optical microscopy and nanoscopy]. Casopis lékaru ceských [Cas Lék ces. = Journal Czech Physicians]159: 286-297
  2. Hausmann M,Neitzel C, Bobkova E, Nagel D, Hofmann A, Chramko T, Smirnova E, Kope?ná O, Pagá?ová E, Boreyko A, Krasavin E, Falkova I, Heermann DW, Pilarczyk G, Hildenbrand G, Bestvater F, Falk M (2020) Single Molecule Localization Microscopy analyses of DNA-repair foci and clusters detected along particle damage tracks. Front. Phys. 8: 578662; doi: 10.3389/fphy.2020.578662
  3. Falk M, Wolinsky M, Veldwijk MR, Hildenbrand G, Hausmann M (2020) Gold nanoparticle enhanced radiosensitivity of cells: Considerations and contradictions from model systems and basic investigations of cell damaging for radiation therapy. In: “Nanoparticle Enhanced Radiation Therapy – Principles, Methods and Applications” (eds. Sajo E, Zygmanski P),IOP Publishing Ltd 2020, pp. 10-1 – 10-25; https://doi.org/10.1088/978-0-7503-2396-3ch10
  4. Hausmann M, Pilarczyk G, Maus E, Hesser J, Hildenbrand G (2020) Super-Resolution Microscopy of nanogold-labelling. In: “Nanoparticle Enhanced Radiation Therapy – Principles, Methods and Applications” (eds. Sajo E, Zygmanski P),IOP Publishing Ltd 2020, pp. 11-1 – 11-8;
    https://doi.org/10.1088/978-0-7503-2396-3ch11
  5. Bartosova M, Herzog R, Ridinger D, Levai E, Jenei H, Zhang C, González Mateo GT, Marinovic I, Hackert T, Bestvater F, Hausmann M, López Cabrera M, Kratochwill K, Zarogiannis SG, Schmitt CP (2020) Alanyl-glutamine restores tight junction organization after disruption by a conventional peritoneal dialysis fluid. Biomolecules 10: 1178; doi: 10.3390/biom10081178
  6. Hausmann M, Lee J-H, Hildenbrand G (2020) 3D DNA FISH for analyses of chromatin-nuclear architecture. In: “Epigenetics Methods”, Vol 18 (ed. Tollefsbol T) Elsevier Academic Press: pp 399-418; doi.org/10.1016/B978-0-12-819414-0.00020-3